陆良思考了一下，他这一次选择的试验对象为小鼠。

虽然说，对于小鼠试验，细胞试验无疑是更加方便快捷。

但细胞试验存在一个很大的问题。

那就是，你永远都猜不到，你的细胞为什么会死。

你哪怕再怎么做好灭菌工作，紫外灯也好，超净台也好，细胞该死还是会死。

有可能，你今天左脚踏进细胞房，你养的细胞看你很不爽，于是他选择了自杀。

陆良并不是很擅长养细胞，或者说，但凡经他手养过的细胞，最后都死绝了，估计是细胞看他十分不爽。

因此，比起养细胞，陆良更倾向于去养小鼠。

而且小鼠试验能够提供的试验数据更加全面和详细。

陆良新建word文档，在文档上敲下几个大字，试验方案。

试验方案的设计很简单，直接翻几篇文献出来，按照别人文献上的试验思路去设计就行了。

陆良第一个考虑到的，就是试验小鼠的来源。

这试验小鼠可不是下水道里的耗子这么简单，那都是由公司培养出来，专门用于动物试验的小鼠。

当然，这种小鼠价格也是昂贵，十多只小鼠能卖到一千多块钱。

小鼠模型不用担心，直接在厂商那里就能够购买到2型糖尿病小鼠模型，这种小鼠都是培养好的，直接拿来用就行了。

无非就是花点钱而已，花不多了多少。

反正现在课题组经费充足。

在解决完小鼠模型的事情后，陆良继续往下思索。

试验先设置三个组，一组空白对照，一组利拉鲁肽对照，最后一组是试验组，也就是二甲双胍组。

每个试验组先预订12只小鼠。

但考虑到小鼠在试验过程中可能会出现个别死亡现象。

因此，为了以防万一，每个小组实际喂养的小鼠会增加到14—16只小鼠。

在敲定小鼠的数量和组别之后，陆良开始思索起药物的添加方式。

一般来说，小鼠实验中，常见的添加方式有两种。

一种是小鼠日粮添加，就是将药物添加到小鼠日粮中，让小鼠在采食的时候，将药物一起吃下去。

另一种是饮水添加，也就是将药物添加在水源中。

如果是其他的试验，这倒也没有什么问题，但这是药物，必须要考虑到药物剂量的精准性。

而日粮添加和饮水添加都存在一个很大的弊端。

你无法确保每一只小鼠，能将当天的日粮或是饮水全部吃完。

有的小鼠，它吃到一半，他就不吃了！

诶，就是玩！

这个时候，药物的剂量就会出现问题，从而影响到整个试验。

因此，药物添加的最好方式，那就是灌胃！

直接给小鼠灌进去，百分百确保每一只小鼠都服用了相同剂量的药物。

陆良在word文档上写下自己接下来的试验计划。

然后再是试验周期，这个时间点需要掐准。

饲养小鼠的地点、方式，试验结束时需要从小鼠身上采集的样本，例如血清之类的。

最后是需要检测的指标，血清中葡糖糖、胰岛素、SOD、MAD、白介素-1β，白介素6.......

这些指标都被陆良一一罗列清楚，只有这样，才能够确保整个试验过程中不会出现太大的纰漏。